组织血流成像仪，也叫作激光多普勒血流仪，是采用激光多普勒技术，对组织血流进行连续监测。可用于记录由于皮肤营养和体温调节等因素引起的毛细血管，微静脉和微动脉中的血流变化，如脑皮质血流、海马血流、肠系膜血流、肝血流、肾血流、脾脏血流等各组织血流量、流速、组织血氧测定。当动物或人的组织受到激光照射时，便会散射出相应的反射光。当组织内含有移动的物质（如血细胞），则血流的动力学反射光信号便会呈现出来。扫描式血流成像系统利用高敏感性的CCD摄影机，高速捕捉动力学散射光信号，然后通过计算机分析产生血流影像。型号：LAB 单通道型号型号：LAB 2ch 双通道型号
激光血流仪的主要功能特点：
· 用于大鼠、小鼠脑血流测定，各组织脏器血流测定等；
· 测试范围广，根据所要检测的组织选用相应的探头；
· 探头校准数据自动存储于芯片中，实现了探头的免校准，即插即用；
· 分析软件功能强大，自动生成报告，提供长时间连续监测；
· 可选配多通道配置，同时对多多个部位或只动物进行测量；
· 可将多台主机与一台计算机相连；主要参数：
· 用于连续测量组织血流· 测试激光：780nm 半导体激光，CLASS 1M 级别· 信号带宽：24HZ-24KHZ· 时间常数：0.1, 1, 3 sec· 测定项目：组织血流量：0–1000.0(mL/min/100g 相当)，血流变化曲线· 受光强度模拟信号输出：0– 10V· 血流模拟信号输出：0– 10V· 光纤探针：100/140 μm· 测定范围：约 1mm 直径范围内· 测定深度：0.5mm – 1mm· 工作温度范围：5-40℃· 使用湿度范围：0-90% 主要应用领域
科研应用
临床研究应用
临床应用
大脑中动脉缺血 下肢缺血 皮层扩散性抑制 针灸经络 肠系膜血流 休克 牙髓活力测试
血管内皮功能障碍 缺血性溃疡 周围神经病变 重症下肢缺血 雷诺综合征 斑贴试验 风团及潮红反应 体位性血管收缩 肠及胃黏膜血流
烧伤评价 皮瓣监测 皮肤灌注压 股骨头血流 脉量（PVR） 足趾灌注压 踝肱压力指数（ABPI） 轴突反射 阻断后反应性充血
根据研究需求，还可以选择：激光散斑成像系统
激光散斑成像系统（激光多普勒扫描成像系统）利用多普勒原理，通过光频谱分析获得血流分布图，具有实时成像且分辨率高的特点，适合对多种组织器官进行点式或线式的快速扫描。
可以对组织血流进行连续监测，用于记录由于皮肤营养和体温调节等因素引起的毛细血管，微静脉和微动脉中的血流变化，如脑皮质血流、海马血流、肠系膜血流、肝血流、肾血流、脾脏血流等各组织血流量、流速、组织血氧测定。广泛应用于临床研究和科研实验室。
型号：OZ-2/OZ-3性能介绍：
· 非接触：图像由低功率激光扫描组织获得。患者与扫描仪之间距离最大1m；
· 日间操作：独特的光学设计，即使在室内环境光线很强时也能操作；
· 重复扫描模式：可对进行性反应成像，并通过自动分析功能定量；
· 彩色数码相机简化扫描设置，并提供扫描区域的照片；
· 高分辨率高达256x256个
· 独立检测：分辨率为0.2~2.0mm/像素
· 还可提供0.1mm/像素的高分辨率型号；
· 灵活的扫描尺寸，从1像素到50cmx50cm的任意矩形；
· 界面友好的软件，数据库记录并存储了患者资料和图像信息非常容易进入和进行搜索；
· 双波长/高分辨率版本可供选择； 激光多普勒血流仪的测试原理图：
主要技术参数:
· 激光光源：单波长系统，近红外780nm或830nm，红光635nm-690nm，2.5mW，光束1.0mm，IEC 60825-1:2001标准3R级；
· CCD相机：自动聚焦，电动10倍光学变焦，752x582像素分辨率；
· 带宽：取决于扫描速度：低通(3db) 20Hz、100Hz或250Hz； 可选高通(0.1db)3Khz、15Khz或22.5Khz；
· 范围和扫面区域：距离20cm，最大面积为13cmx13cm；距离100cm，最大面积为50cmx50cm.
· 扫描速度：约4ms/像素，10ms/像素或50ms/像素；
· 典型成像速度为20秒完成15cmx15cm图像在64x64像素分辨率；
· 5分钟内完成50cmx50cm，图像在256x256像素分辨率；
· 空间分辨率：最大256x256像素：20cm处0.2mm/像素的“常规扫描”，10cm处2.0mm/像素的“大点扫描”
· 照明条件：正常环境照明；
· 软件：基于Windows™的控制；
· 处理和分析软件支架：移动支架、桌面支架；
· 电压：接受84-264V交流电，50VA，50-60Hz
· 控制器：尺寸W H D mm 305 x 115 x 260；重量4.5kgs.
· 扫描头：尺寸W H D mm 426 x 244 x 300；重量8kgs.
· 存放温度：0-45℃.
· 使用温度：15-30℃.
小动物激光多普勒血流仪相关文献：1. Yamanaka H, Yamaoka T, Mahara A, et al. Tissue-engineered submillimeter-diameter vascular grafts for free flap survival in rat model. Biomaterials. 2018;179:156-163. doi:10.1016/j.biomaterials.2018.06.022.2. Liu Y, Mahara A, Kambe Y, et al. Endothelial cell adhesion and blood response to hemocompatible peptide 1 (HCP-1), REDV, and RGD peptide sequences with free N-terminal amino groups immobilized on a biomedical expanded polytetrafluorethylene surface. Biomater Sci. 2021;9(3):1034-1043. doi:10.1039/d0bm01396j.3. Nosaka M, Ishida Y, Kimura A, et al. Crucial Involvement of IL-6 in Thrombus Resolution in Mice via Macrophage Recruitment and the Induction of Proteolytic Enzymes. Front Immunol. 2020;10:3150.doi:10.3389/fimmu.2019.03150.4. Fukumoto Y, Tanaka KF, Parajuli B, et al. Neuroprotective effects of microglial P2Y1 receptors against ischemic neuronal injury. J Cereb Blood Flow Metab. 2019;39(11):2144-2156. doi:10.1177/0271678X18805317.5. Morihara R, Yamashita T, Osakada Y, et al. Efficacy and safety of spot heating and ultrasound irradiation on in vitro and in vivo thrombolysis models. J Cereb Blood Flow Metab. 2022;42(7):1322-1334. doi:10.1177/0271678X221079127.6. Nosaka M, Ishida Y, Kimura A, et al. Contribution of the TNF-α (Tumor Necrosis Factor-α)-TNF-Rp55 (Tumor Necrosis Factor Receptor p55) Axis in the Resolution of Venous Thrombus. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2018;38(11):2638-2650. doi:10.1161/ATVBAHA.118.311194.7. Tanaka M, Ogaeri T, Samsonov M, et al. The 5α-Reductase Inhibitor Finasteride Exerts Neuroprotection Against Ischemic Brain Injury in Aged Male Rats. Transl Stroke Res. 2019;10(1):67-77. doi:10.1007/s12975-018-0624-0.8. Sakata Y, Yoshida C, Fujiki Y, et al. Effects of Casein Hydrolysate Ingestion on Thermoregulatory Responses in Healthy Adults during Exercise in Heated Conditions: A Randomized Crossover Trial. Nutrients. 2020;12(3):867. doi:10.3390/nu12030867.
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